Что означают грамположительные кокки в смыве из легких

Грамположительные кокки – это бактерии, которые обладают шаровидной формой и окрашиваются по Граму в фиолетовый цвет. Они могут быть представленными различными родами, такими как Staphylococcus и Streptococcus, и встречаются в нормальной микрофлорe человека, но также могут вызывать инфекционные заболевания.

Обнаружение грамположительных кокков в смыве из легких может указывать на наличие инфекции или воспалительного процесса в дыхательных путях. В таких случаях важно провести дополнительные исследования и назначить соответствующее лечение для устранения потенциальной угрозы здоровью.

Что такое грам (+) кокки?

Грамположительные бактерии, обозначаемые как Грам (+), — это такие микроорганизмы, которые при окрашивании по Граму остаются окрашенными в синий цвет и не теряют свою окраску после обработки, в отличие от грамотрицательных представителей.

Окрашивание по Граму осуществляется с помощью анилиновых красителей, таких как метиловый фиолетовый или генциановый, после чего краситель фиксируют иодным раствором. В процессе промывания, добавляется контрастирующий красный краситель, который окрасит грамотрицательные бактерии в розовый или красный цвет.

Что относится к грамположительным Коккам?

Среди грамположительных кокков выделяются стафилококки и стрептококки, которые являются основными возбудителями гнойно-воспалительных процессов у людей.

Такой метод классификации по строению клеточной стенки бактерий называется окрашиванием по Граму. Соответственно, бактерии , изменившие цвет при первом окрашивании, относятся к грамположительным , а отреагировавшие лишь на контрастное вещество – к грамотрицательным .

Стафилококки. Особенности стафилококков. Отличительные особенности стафилококков

Стафилококки относятся к классу Firmicutes, семейству Micrococcaceae и роду Staphylococcus. Эти бактерии широко распространены и могут колонизировать кожу и слизистые оболочки как людей, так и животных. Первые представители данного рода были выделены Р. Кохом в 1878 году и Л. Пастером в 1880 году из источников гнойных инфекций у человека.

Эти бактерии имеют неподвижные клетки диаметром от 0,5 до 1,5 мкм (см. рис. 12-1). В мазках стафилококки могут располагаться единично, парами или в виде гроздей (см. рис. 12-2).

Свойство стафилококков образовывать скопления, напоминающие гроздья винограда в результате деления во взаимно перпендикулярных плоскостях, определило их название [от греч. staphyle, виноградная гроздь, + kokkos, зерно, ягода].

Основными отличительными чертами стафилококков являются их характерная форма и положительная реакция на окраску по Граму. Оптимальной температурой для их роста является диапазон от 30 до 37 °C.

Липохромные пигменты, вырабатываемые стафилококками, помогают защищать микроорганизмы от поражающего действия свободных радикалов кислорода. Стафилококки имеют каталаза-положительный ответ; они содержат цитохромы, но обычно оксидаза-отрицательны. Эти бактерии проявляют высокую биохимическую активность: они могут восстанавливать нитраты, образовывать H2S, расщеплять мочевину и ферментировать различные углеводы с образованием кисломолочных продуктов.

Таблица 12-1. Основные инфекционные болезни, вызванные стафилококками у человека

Антигены стафилокков

У стафилококков выделяют более 50 антигенных субстанций, разделяемых на родовые, видовые и типовые Аг. Многие стафилококки признаны аллергенами. Родовые Аг нередко способны перекрёстно реагировать с изоантигенами клеток организма человека (эритроцитов, почек и др.), что может привести к развитию аутоиммунной патологии.

Тейхоевые кислоты могут служить видовыми специфичными антигенами для стафилококков. Для Staphylococcus aureus также характерен белок А как видоспецифичный антиген. Стафилококки не боятся высыхания, сохраняя свою вирулентность; они погибают под действием солнечного света за 10–12 часов. К нагреванию стафилококки проявляют устойчивость—при температуре 70-80 °C они умирают за 20-30 минут, а при 150 °C — за 10 минут; воздействие сухого жара убивает их за 2 часа. Бактерии менее восприимчивы к дезинфицирующим средствам, но сохраняют стойкость к чистому этанолу. В зависимости от наличия коагулазы стафилококки делятся на две группы.

Среди коагулаза-положительных стафилококков поражения у человека вызывает лишь S. aureus; среди коагулаза-отрицательных видов — S. epidermidis и S. saprophyticus.

Характеристика грамположительной микрофлоры, выделенной из крови кардиохирургических пациентов

Цель данного исследования заключалась в изучении структуры грамположительных кокков, выделенных из крови пациентов с кардиооперациями, а В оценке их чувствительности к антибиотикам. Материалом для работы послужили образцы, собранные у пациентов, оперированных в ННИИПК в период с 2007 по 2011 год. Всего было собрано 16586 образцов.

Для бактериологического исследования крови использовали автоматизированную систему BacT/Alert 3D, идентификацию микроорганизмов проводили при помощи анализаторов ATB Ex * pression (BioMerieux, Франция) и Phoenix (BD, США). Результаты: За пятилетний период (с 2007 по 2011 гг.) при исследовании гемокультуры выделено 903 штамма микроорганизмов, из них 508 – грамположительные кокки, что составило 56,3%.

В числе выделенной кокковой флоры преобладали стафилококки, составившие 70,3%, из которых 42,3% составил Staphylococcus epidermidis. Всего было выделено 13 видов стафилококков, остальные коагулазонегативные стафилококки составили 23,6%, среди которых чаще всего фиксировались Staphylococcus hominis и Staphylococcus saprophyticus – 6,7% и 6,9% соответственно, а Staphylococcus haemolyticus – 5,7%.

На долю Staphylococcus aureus приходится 4,3% в структуре грамположительных кокков. Эпидермальный стафилококк характеризовался высокой частотой обнаружение метициллинрезистентных штаммов (91,2%). Все выделенные штаммы были чувствительны к ванкомицину и линезолиду. Высокой активностью в отношении Staphylococcus epidermidis обладал моксифлоксацин (90,3%).

Чувствительность выделенных штаммов к другим фторхинолонам, таким как ципрофлоксацин и левофлоксацин, оказалась невысокой – 33% и 39,8% соответственно. В то же время фузидиевая кислота показала высокую эффективность (85,5%), рифампицин оказался активным для 61,4% штаммов, а ко-тримоксазол — для 50% штаммов.

Чувствительность Staphylococcus aureus к оксациллину была значительно выше – 66,7%, к ванкомицину и линезолиду чувствительны все выделенные штаммы. Энтерококки в структуре выделенных грамположительных кокков составили 25,6%, из них Enterococcus faecalis 12,4%, Enterococcus faecium 11,2%, прочие 1,9%.

Все штаммы Enterococcus faecalis и Enterococcus faecium продемонстрировали 100% чувствительность к ванкомицину, линезолид подавлял 95% и 92,7% их штаммов соответственно, в то время как чувствительность к гентамицину составила 26,4% и 18,3%. Ампициллин был эффективен для 89,4% штаммов Enterococcus faecalis и лишь для 10% Enterococcus faecium. Доля стрептококков в общей структуре выделенных грамположительных кокков за указанный период составила 4,1%. Выводы исследования показывают, что метициллинрезистентный Staphylococcus epidermidis доминировал в выделенной из крови флоре. Все штаммы стафилококков и энтерококков оказались чувствительными к ванкомицину, а линезолид проявил высокую активность.

В смыве с легких обнаружены грамположительные кокки что это такое

Мокрота – отделяемый из легких и дыхательных путей (трахеи и бронхов) патологический секрет. Общий анализ мокроты – лабораторное исследование, которое позволяет оценить характер, общие свойства и микроскопические особенности мокроты и дает представление о патологическом процессе в дыхательных органах.

Мокрота – это патологический секрет легких и дыхательных путей (бронхов, трахеи, гортани), который отделяется при откашливании. У здоровых людей мокрота не выделяется. В норме железы крупных бронхов и трахеи постоянно образовывают секрет в количестве до 100 мл/сут., который проглатывается при выделении.

Трахеобронхиальный секрет включает слизь, состоящую из гликопротеинов, иммуноглобулинов, антибактериальных белков, клеток (макрофагов, лимфоцитов, эпителиальных клеток бронхов) и прочих компонентов. Этот секрет обладает бактерицидными свойствами и помогает очищению альвеол от вдыхаемых частиц. При заболеваниях трахеи, бронхов и легких наблюдается увеличение выработки слизи, которая затем отхаркивается в виде мокроты. У курильщиков без признаков дыхательных заболеваний также может наблюдаться обильное выделение мокроты.

Клинический анализ мокроты является лабораторным исследованием, которое позволяет оценить характер, общие свойства и микроскопические особенности мокроты. На основании данного анализа судят о воспалительном процессе в органах дыхания, а в некоторых случаях ставят диагноз.

В ходе клинического исследования мокроты оцениваются такие параметры, как объем мокроты, ее оттенок, запах, консистенция, наличие примесей, клеточный состав, количество волокон, а Выявляются микроорганизмы (бактерии, грибы) и паразиты.

Мокрота по составу неоднородна. Она может содержать слизь, гной, серозную жидкость, кровь, фибрин, причем одновременное присутствие всех этих элементов не обязательно. Гной образуют скопления лейкоцитов, возникающие в месте воспалительного процесса. Воспалительный экссудат выделяется в виде серозной жидкости.

Появление крови в мокроте может быть связано с изменениями в стенках легочных капилляров или травмами сосудов. Состав мокроты и ее характеристики зависят от специфики патологического процесса в дыхательных органах.

Микроскопический анализ дает возможность под многократным увеличением рассмотреть присутствие различных форменных элементов в мокроте. Если микроскопическое исследование не выявило наличия патогенных микроорганизмов, это не исключает присутствия инфекции. Поэтому при подозрении на бактериальную инфекцию одновременно рекомендуется выполнять бактериологическое исследование мокроты с определением чувствительности возбудителей к антибиотикам.

Материал для анализа необходимо собирать в стерильный одноразовый контейнер. Пациенту важно помнить, что для исследования требуется мокрота, откашляемая из глубоких дыхательных путей, а не слюна или слизь из носоглотки. Сбор мокроты следует проводить утром до еды, предварительно тщательно прополоскав рот и горло, а также почистив зубы.

Результаты анализа должны оцениваться врачом в комплексе с учетом клиники заболевания, данных осмотра и результатов других лабораторных и инструментальных методов исследования.

Для каких целей проводится исследование?

• Для диагностики заболеваний легких и дыхательных путей;
• для оценки характера патологического процесса в дыхательной системе;
• для динамического мониторинга состояния дыхательных путей у пациентов с хроническими заболеваниями;
• для оценки эффективности проводимой терапии.

Когда назначается исследование?

• При заболеваниях легких и бронхов (бронхитах, пневмониях, бронхиальной астме, хронической обструктивной болезни легких, туберкулезе, бронхоэктатической болезни, новообразованиях дыхательных путей, грибковых или гельминтозных инфекциях легких, интерстициальных заболеваниях легких);
• при наличии кашля с выделением мокроты;
• при неопределенном или неясном процессе в грудной клетке по результатам аускультации или рентгенографического исследования.

Что означают полученные результаты?

Количество мокроты при разных патологических процессах может составлять от нескольких миллилитров до двух литров в сутки.

Незначительное количество мокроты может указывать на:

• острые бронхиты,
• пневмонии,
• застойные явления в легких, в начале приступа бронхиальной астмы.

Большое количество мокроты может выделяться при:

• отек легких,
• гнойные процессы в легких (при абсцессе, бронхоэктатической болезни, гангрене легкого, при туберкуле с распадом ткани).

По изменению объема мокроты иногда можно проследить динамику воспалительного процесса.

• Цвет мокроты
• Чаще всего мокрота имеет бесцветный оттенок.
• Зеленый оттенок может свидетельствовать о присоединении гнойного воспаления.
• Разные оттенки красного могут свидетельствовать о наличии свежей крови, в то время как ржавый цвет указывает на распад эритроцитов.
• Ярко-желтая мокрота наблюдается при скоплении большого количества эозинофилов (например, при бронхиальной астме).
• Темная или серая мокрота может свидетельствовать о наличии угольной пыли и характерна для пневмокониозов и курильщиков.
• Мокроту могут окрашивать и некоторые лекарственные средства (например, рифампицин).

О запахе

• Мокрота обычно не имеет запаха.
• Гнилостный запах может появляться при наличии гнилостной инфекции (например, при абсцессе, гангрене легкого, гнилостном бронхите, бронхоэктатической болезни, раке легкого с некрозом).
• Своеобразный «фруктовый» запах мокроты характерен для вскрывшейся эхинококковой кисты.

Характер мокроты

• Слизистая мокрота наблюдается при катаральном воспалении в дыхательных путях, например, на фоне острого и хронического бронхита, трахеита.
• Серозная мокрота наблюдается при отеке легких из-за выхода плазмы в альвеолы.
• Слизисто-гнойная мокрота наблюдается при бронхите, пневмонии, бронхоэктатической болезни, туберкулезе.
• Гнойная мокрота возникает при гнойном бронхите, абсцессе, актиномикозе легких, гангрене.
• Кровянистая мокрота выделяется при инфаркте легких, новообразованиях, травме легкого, актиномикозе и других факторах кровотечения в органах дыхания.
• Консистенция мокроты зависит от содержания слизи и клеток и может варьироваться от жидкой до густой или вязкой.
• Плоский эпителий в количестве более 25 клеток указывает на загрязнение материала слюной.
• Клетки цилиндрического мерцательного эпителия, которые находятся в слизистой оболочке трахеи, гортани и бронхов, могут выявляться при бронхитах, трахеитах, бронхиальной астме и злокачественных новообразованиях.
• Альвеолярные макрофаги в повышенном количестве в мокроте выявляются при хронических процессах и на стадии разрешения острых процессов в бронхолегочной системе.
• Лейкоциты в большом количестве присутствуют при заметном воспалительном процессе и входят в состав слизисто-гнойной и гнойной мокроты.
• Эозинофилы обнаруживаются при бронхиальной астме, эозинофильной пневмонии, глистных поражениях легких, инфаркте легкого.
• Эритроциты. Нахождение отдельных эритроцитов в образце мокроты не имеет диагностической ценности. При наличии свежей крови в мокроте можно обнаружить неизмененные эритроциты.
• Клетки с признаками атипии присутствуют при злокачественных новообразованиях.
• Эластические волокна возникают в процессе разрушения легочных тканей, что ведет к повреждению эпителия и высвобождению эластических волокон. Они могут быть выявлены при таких заболеваниях, как туберкулез, абсцесс, эхинококкоз и опухоли легких.
• Коралловидные волокна выявляют при хронических заболеваниях (например, при кавернозном туберкулезе).
• Обызвествленные эластические волокна представляют собой эластические волокна, которые содержат соли кальция. Их наличие в мокроте является характерным признаком туберкулеза.
• Спирали Куршмана образуются при спастическом состоянии бронхов и наличии в них слизи; характерны для бронхиальной астмы, бронхитов, опухолей легких.
• Кристаллы Шарко-Лейдена — это продукты разрушения эозинофилов, которые выявляются при бронхиальной астме, эозинофильных инфильтратах в легких и легочной двуустке.
• Мицелий грибов появляется при грибковых поражениях бронхолегочной системы (например, при аспергиллезе легких).
• Прочая флора. Наличие бактерий (кокков или бацилл), особенно в значительных количествах, указывает на возможную бактериальную инфекцию.

Важные замечания

• Если мокрота выделяется с трудом, перед исследованием могут быть назначены отхаркивающие средства, обильное теплое питье и ингаляции с использованием физиологического раствора.
• Анализ результатов должен проводиться лечащим врачом с учетом клинической картины и данных других методов обследования.

Также рекомендуется:

• Провести посев на Bordetella pertussis/parapertussis
• Streptococcus pyogenes, ДНК [реал-тайм ПЦР]
• Streptococcus pneumoniae, ДНК [реал-тайм ПЦР]
• Клиническое исследование крови: общий анализ, лейкоцитарная формула, СОЭ (с микроскопическим исследованием мазка при выявлении патологических нарушений)

Кто назначает исследование?

Специалисты: пульмонолог, терапевт, педиатр, врач общей практики, ревматолог, фтизиатр, аллерголог, инфекционист, клинический миколог, онколог, паразитолог.

Антибиотикограмма

По завершению исследования составляется антибиотикограмма. В ней находит свое отражение список всех, задействованных при проведении тестирования антибактериальных препаратов. Напротив каждого из медикаментов выставляется буква, обозначающая ту или иную степень чувствительности патогенов к антибиотикам:

• «S». Патоген поддается воздействию определенного антибиотика, соответственно, этот препарат будет эффективен для лечения заболеваний дыхательных путей;
• «I». Бактерия обладает умеренной чувствительностью к антибактериальному препарату. Такой медикамент может использоваться для лечения, если нельзя назначить более действенный антибиотик (например, из-за непереносимости у пациента);
• «R». Патогенные микроорганизмы проявляют полную резистентность к антибактериальному препарату. Данный антибиотик не подходит для лечения, так как не способен обеспечить выздоровление пациента.

Анализ на чувствительность к антибиотикам позволяет выбрать те антибактериальные препараты, которые обеспечат максимальный терапевтический эффект, избегая назначения неэффективных медикаментов.

Интерпретация результатов анализа

В заключении по итогам микробиологического исследования приводятся выявленные аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы и указывается их титр. Расшифровкой результатов занимается лечащий врач. В случае необходимости, для уточнения диагноза, специалист может назначить дополнительное обследование.

Несмотря на значительное значение микробиологического анализа, нельзя на 100% исключать вероятность получения неверных данных. Это может произойти по вине пациента, если не соблюдаются правила сбора мокроты, при длительном хранении материала или при проведении тестирования на фоне приема антибиотиков. Неправильные результаты могут быть связаны с ошибками в технике проведения культурального исследования мокроты, что маловероятно при выполнении анализа квалифицированным специалистом.

ОЦЕНКА МИКРОБНОГО СОСТАВА МОКРОТЫ ПРИ ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ ПНЕВМОНИИ

Бактерии, связанные с организмом человека, вновь стали объектом пристального внимания после получения результатов генетического изучения микрофлоры (микробиоты). Анализ генов микробиоты показал, что большая ее часть остается неизвестной. Существующие методы выделения чистых культур бактерий в сумме позволяют определить лишь небольшую долю от общего состава микробиоты [1].

Бактерии, геномы которых удается обнаружить, но методы выделения чистых культур еще не разработаны, называются «пока не культивируемыми». Таких бактериальных видов много среди патогенных микроорганизмов [2, 3]. Поскольку организм человека является основной средой обитания для большинства патогенных и условно-патогенных бактерий, вызывающих заболевания, можно утверждать, что портфель патогенов даже для хорошо известных болезней остается неполным. Цель этого исследования заключалась в анализе микробного состава мокроты у пациентов с внебольничной пневмонией с использованием стандартных лабораторных методов и метагеномных технологий.

Материал и методы

Исследовательский материал – мокрота пациента с внебольничной пневмонией. Время от сбора образца до начала исследования не превышало 24 часов, при этом мокрота хранилась при температуре 4°C. Использовались питательные среды: Уриселект 4 (Bio-Rad, Франция), колумбийский и шоколадный агар (bioMerieux, Франция). Определение биохимической активности микроорганизмов проводилось с помощью системы Vitek 2 (bioMerieux, Франция).

Выделение ДНК

Извлечение ДНК из патологического материала и бактериальных культур проводилось с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-В» (Россия) в соответствии с протоколом. Амплификация производилась с использованием эубактериальных праймеров 27F и 534R, которые охватывают гипервариабельный участок гена 16S рибосомальной рибонуклеиновой кислоты (рРНК): 27F: ‘5-AGAGTTTGATYMTGGCTCAG-3’ 534R: ‘5-ATTACCGCGGCTGCTGG-3’. Данная пара олигонуклеотидных праймеров специфична для консервативных участков гена 16S рРНК и используется в метагеномных исследованиях для определения бактериального разнообразия различных сообществ [4]. Метагеномное секвенирование фрагмента гена 16S рРНК проводилось на пиросеквенаторе Roche 454 Genome Sequencer FLX Titanium. Максимальная длина полученных последовательностей составила 507 нуклеотидов, химерные последовательности и последовательности короче 300 нуклеотидов не включались в анализ.

Анализ разнообразия и таксономического состава

Каждая последовательность, полученная в процессе пиросеквенирования, была идентифицирована путем сопоставления с последовательностями из баз данных GenBank и EzTaxon, с использованием алгоритмов BLASTN (Basic Local Alignment Search Tool Nucleotide) для поиска и парного сравнения [5]. В процессе идентификации применялись следующие пороги сходства (x – сходство): виды (x ≥ 97%), роды (97 > x ≥ 94%), семейства (94 > x ≥ 90%), порядки (90 > x ≥ 85%), классы (85 > x ≥ 80%), отряд (80 > x ≥ 75%).

Для определения видового разнообразия таксономического состава и сравнения сообществ применяли программу Pyrosequencing pipeline (http://pyro.cme.msu.edu). Полученные последовательности выравнивали и проводили кластерный анализ с помощью программы Complete Linkage Clustering, входящей в состав Pyrosequencing pipeline.

Кластерный анализ проводился на различных уровнях, определяемых расстоянием между кластерами (от 0 до 0,25 с шагом 0,01). Выделение филотипов (OTU – operational taxonomic unit – операционная таксономическая единица) осуществлялось при кластерном расстоянии 0,03; оценка таксономической сложности сообществ проводилась на уровнях различий, соответствующих следующим таксонам: вид – 0,03; род – 0,05; семейство – 0,1; использовалась программа Rarefaction (Pyrosequencing pipeline).

Для характеристики таксономического состава сообществ был проведен кластерный анализ с параметром расстояния 0,25. Далее для каждого кластера с помощью программы Dereplicate Request определяли нуклеотидную последовательность, соответствующую центру кластера, имеющую минимальную сумму квадратов расстояний до других входящих в кластер последовательностей. Репрезентативные последовательности кластеров таксономически классифицировали. Классификация видов на всех этапах работы произведена на основе генотипического подхода в соответствии с международным кодом номенклатуры бактерий (International Code of Nomenclature of Bacteria). В случае, если репрезентативная последовательность имела гомологию более 97% с последовательностью валидированного микроорганизма, кластер относили к соответствующему виду.

Результаты и обсуждение

Стандартная микробиологическая диагностика позволила выделить из мокроты больного и идентифицировать бактерии P. aeruginosa. Бактерии этого вида входят в число известных и широко распространенных возбудителей заболеваний дыхательной системы и наиболее часто встречаются у больных внебольничной пневмонией и муковисцидозом.

Метагеномное исследование данного образца мокроты выявило значительное разнообразие видов бактерий. Выявлены таксоны, относящиеся к 7 различным порядкам и 8 семействам (таблица). Преобладающими в патологическом материале оказались бактерии двух порядков: Pseudomonadales и Burkholderiales, представленность которых составила 88,3% и 8,5% соответственно.

В материале выявлены бактерии родов Pseudomonas, Achromobacter, Sphingomonas, Streptococcus и Herbaspirillum. Эти бактерии удалось идентифицировать только до рода, и их вид не определен с достаточной точностью на основании существующей базы данных.

В дополнение к этому, в мокроте были найдены бактерии этих же родов, для которых был определен вид: Pseudomonas aeruginosa, Achromobacter insolitus, Achromobacter xylosoxidans, Achromobacter denitrificans, Granulicatella adiacens, Corynebacterium striatum. Большинство идентифицированных генетическим методом бактерий относятся к менее изученным микроорганизмам.

Некоторые из них, как, например, Herbaspirillum, больше известны в качестве представителей микрофлоры почвы или в связи с растениями [6]. Вместе с тем некоторые из этих бактерий обнаружены и при заболеваниях дыхательной системы.

Например, Achromobacter xylosoxidans и Achromobacter denitrificans были описаны у пациентов с пневмонией и муковисцидозом, в то время как бактерии рода Sphingomonas sp. были выделены при внебольничной пневмонии, а Granulicatella adiacens и Corynebacterium striatum были выявлены при внутрибольничной пневмонии [7–11]. Таким образом, любая из бактерий, обнаруженных в результате метагеномного анализа, представляет собой потенциального возбудителя данного патологического процесса.

Исходя из этого очень вероятно, что фактически у данного больного имеет место смешанная инфекция, в число возбудителей которой могут входить неродственные грамотрицательные палочки родов Pseudomonas, Achromobacter, Sphingomonas, Herbaspirillum и грамположительные кокки и палочки Granulicatella и Corynebacterium. Сравнивая результаты изучения бактерий с использованием классических лабораторных методов и с помощью метагеномного анализа, можно заключить, что многие микроорганизмы не дают роста при стандартных лабораторных методах культивирования.

Существующие микробиологические методы на данный момент не позволяют полностью изолировать и исследовать все бактерии, присутствующие в патологическом материале, и, вероятно, в области инфекции. Главной причиной ограниченных возможностей традиционных лабораторных подходов является широкое распространение бактерий, которые еще не поддаются культуре.

Чаще всего такие бактерии дают рост при совместном выращивании в составе смешанных сообществ, где бактерии предоставляют друг другу определенные факторы, без которых каждые по отдельности расти неспособны. Можно предполагать, что патологический процесс вызван не тем микробом или микробами, которые удалось выделить и идентифицировать.

Результаты подобных исследований значительно снижают актуальную ценность существующих лабораторных исследований, основанных на интернет данных 1930–1940-х годов. Кроме того, полученные данные также указывают на относительность результатов выбора антибиотиков, поскольку не все присутствующие в очаге инфекции бактерии учитываются. В итоге, установлено, что при внебольничной пневмонии смешанные инфекции могут встречаться значительно чаще, чем принято считать. Это также касается бактерий, роль которых в патогенезе заболеваний дыхательных путей остается почти не исследованной. Таким образом, очевидна необходимость пересмотра существующих лабораторных методов диагностики и подходов к выбору антибиотиков.

Микроскопическое (бактериоскопическое) исследование мазка, окрашенного по Граму (Gram Stain. Bacterioscopic examination of different smears (vaginal, cervical, urethral, sputum, wound, etc)

Бактериоскопия (от лат. — «скопео» — смотрю) — лабораторный метод исследования бактерий под микроскопом. Метод широко используется врачами разных специальностей при подозрении на инфекционный процесс и наличии гнойно-воспалительных проявлений заболевания, а также при диспансерных обследованиях в гинекологической и акушерской практике.

Во время микроскопического анализа можно обнаружить такие микроорганизмы, как бактерии, грибы (в случае кандидоза) и простейшие (например, при трихомониазе). Ключевыми аспектами данного исследования являются морфологическая оценка, то есть форма бактерий, их размеры и расположение, а также количественные характеристики (от очень низкого до обильного) и реакция на красители (грамположительные и грамотрицательные клетки).

Нормальной флорой при исследовании гинекологических мазков являются грамположительные палочки, которые в результате описываются как лактоморфотипы. При бактериальном вагинозе микробная флора представлена обильной мелкой коккобациллярной грамвариабельной флорой и характеризуется снижением лактоморфотипов. При гонорее в мазке присутствуют грамотрицательные кокки бобовидной формы, расположенные парами внутри и внеклеточно. При других гнойно-воспалительных состояниях (неспецифических ) могут встречаться грамположительные кокки, грамотрицательные палочки. В мазках учитываются также наличие эпителия, присутствие ключевых клеток и количество лейкоцитов.

В мокроте могут обнаруживаться грамположительные кокки, слегка вытянутой формы, с капсулой, расположенные парами, и морфологически напоминающие пневмококки или маленькие грамотрицательные палочки, разнообразные по форме и похожие на гемофилы, а также грамотрицательные кокки, находящиеся поодиночке, что может свидетельствовать о присутствии бранхамелл.

В мазках из ран чаще всего встречаются грамположительные кокки.

Тем не менее, с помощью микроскопии нельзя точно определить вид бактерий. Для этого необходимо провести бактериологический посев.

Материал для исследования:

• гинекологические мазки у женщин (материалы: отделяемое наружных половых органов, уретры, влагалища, шейки матки, полости матки);
• у мужчин исследуются соскобы из уретры, сперма и секрет предстательной железы (семенная жидкость);
• для мазков из других локализаций могут использоваться: мокрота, плевральная, перитонеальная, суставная жидкости и др., а также раневое отделяемое, гной, мазки из зева, уха и выделения из глаз.

Опыт других людей

Алексей, 35 лет: «Когда я узнал, что в смыве из легких обнаружены грамположительные кокки, первое, что пришло в голову, это возможность инфекции. Я сразу вспомнил о стафилококках и стрептококках, которые могут вызывать разные болезни. Врач объяснил, что грамположительные кокки – это как бы микробы, которые в определенных условиях могут стать причиной воспаления. Я стал более внимательным к своему здоровью после этого обследования.»

Мария, 28 лет: «Для меня эта тема была довольно новой. Я всегда думала, что легкие просто фильтруют воздух, а оказывается, там могут быть такие микробы. Мне рассказывали, что грамположительные кокки могут находиться в организме у здоровых людей, но при ослаблении иммунной системы могут вызвать проблемы. Это был для меня довольно тревожный момент, так как здоровье – это самое главное. Я решила больше заботиться о своем иммунитете.»

Дмитрий, 42 года: «Когда доктор сообщил о грамположительных кокках, я был удивлен. Знал, что это что-то с микробами, но не углублялся. После его объяснений я напрягся: стафилококки действительно могут быть опасными. Я начал изучать информацию о том, как с этим бороться и какие меры предосторожности можно предпринять. Появилось много вопросов о том, как поддерживать здоровье легких и избегать таких ситуаций в будущем.»

Вопросы по теме

Что означают результаты анализа, если в смыве с легких обнаружены грамположительные кокки?

Грамположительные кокки в смыве с легких могут указывать на наличие бактериальной инфекции. Эти микроорганизмы, к которым относятся стафилококки и стрептококки, могут вызывать различные заболевания, включая пневмонию и бронхит. Их присутствие может быть результатом как наружного, так и внутреннего инфекционного процесса, поэтому важно дополнительно провести обследование для выяснения источника инфекции и назначения соответствующего лечения.

Какие виды грамположительных кокков наиболее часто встречаются в легких и чем они опасны?

Наиболее распространенные виды грамположительных кокков, обнаруживаемых в легких, включают Streptococcus pneumoniae и Staphylococcus aureus. Streptococcus pneumoniae часто является причиной бактериальной пневмонии, особенно у людей с ослабленной иммунной системой. Staphylococcus aureus, особенно его метициллин-резистентная форма (MRSA), может вызывать серьезные инфекции, трудные для лечения. Эти бактерии способны вызывать не только пневмонию, но и другие осложнения, такие как сепсис и плеврит, что делает их особо опасными.

Каковы основные методы диагностики и лечения грязных инфекций, связанных с грамположительными кокками?

Основными методами диагностики являются микробиологические исследования, включая культуры и тестирование на чувствительность к антибиотикам. После выявления возбудителя врачу необходимо назначить адекватное лечение, которое может включать антибиотики, соответствующие типу обнаруженной инфекции. Важно помнить, что не все грамположительные кокки чувствительны к одинаковым антибиотикам, поэтому индивидуальный подход к лечению является ключевым. В некоторых случаях может потребоваться дополнительное обследование и лечение сопутствующих заболеваний.